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药理学实验中，常常需要用药物对实验动物进行常规处理，这涉及实验动物的给药方法。较常见的给药方法有摄取给药法、注射给药法、涂布给药法和吸入给药法，其中前两种方法较为常用。
把药物放入饲料或溶于动物饮水中让动物自动摄取。此法的优点是操作简便，不会因操作损伤动物。由于不同个体因各种原因其饮水和摄食量有差异，摄入的药量难以控制，不能保证剂量准确。饲料和饮水中的药物容易分解，难以做到平均添加。该方法一般适用于对动物疾病的防治或某些药物的毒性实验，复制某些与食物有关的人类疾病动物模型。
灌胃给药能准确掌握给药量、给药时间、发现和记录药效出现时间及过程。但灌胃操作可能对动物造成损伤，熟练的灌胃技术可减轻对动物的损伤。
动物灌胃用灌胃器，灌胃器由注射器和灌胃管构成，灌胃管由尖端磨平后稍加弯曲的注射器针头制成。小鼠的灌胃管长4～5cm，直径约1mm；大鼠的灌胃管长6～8cm，直径约12mm。灌胃管插入深度大致是从口腔至最后一根肋骨后缘，成年动物插管深度一般是小鼠3cm、大鼠和豚鼠5cm、家兔15cm。
（1）小鼠、大鼠 左手拇指和食指捏住鼠颈部皮肤，并用小指和无名指夹住尾部固定，使鼠腹部向上，右手持灌胃器经口角将灌胃管插入口腔，用灌胃管轻压鼠上腭部，使口腔和食管成一直线，再将灌胃管沿上腭缓缓插入至预定深度，如稍感有阻力且动物无呼吸异常，可将药物注入（图1-2-2-1）。如动物挣扎得厉害、憋气，则应抽出重插。如灌胃管插入气管，动物可能立即死亡。药液注完后轻轻退出胃管，操作宜轻柔，以防损伤食管及膈肌。灌注量小鼠为0.1～0.3mL/10g，大鼠为1～2mL/100g。
图1-2-2-1 小鼠灌胃法
（2）豚鼠 一操作者以左手从动物背部把后肢伸开，握住腰部和双后肢，用右手拇指、食指夹持两前肢。另一操作者右手持灌胃器沿豚鼠上腭壁滑行，插入食管，轻轻向前推进约5cm，插入胃内。
插管时亦可用木制或竹制的开口器，将9号导尿管穿过开口器中心的小孔插入胃内。将导管外口端置于水杯中，若有连续气泡，说明插入了呼吸道，应立即拔出重插，如无气泡，即可注入药物，注药完毕后再注入生理盐水2mL，以保证给药剂量的准确。灌胃完毕后，先退出胃管，后退出开口器。拔插管时，应慢慢抽出，当抽到近咽喉部时应快速拉出，以防残留的液体进入咽喉部，反流入气管。灌胃量为每次每只4～7mL。
（3）家兔 用兔固定箱，可一人操作。如无固定箱，则需两人协作进行。一人坐好，腿上垫好围裙，将家兔的后肢夹于两腿间，左手抓住双耳，固定其头部，右手抓住其两前肢；另一人将开口器横置于家兔口中，把兔舌压在开口器下面（图1-2-2-2），将9号导尿管自开口器中央的小孔插入，慢慢沿上腭壁插入约15cm。插管完毕将胃管的外口端放入水杯中，切忌伸入水中过深，如有气泡从胃管逸出，说明胃管在气管内，应拔出重插。如无气泡逸出，则可将药物推入，并以少量清水冲洗胃管，以保证给药剂量的准确。灌胃完毕后，先退出胃管，后退出开口器。灌胃量为每次每只80～150mL。
图1-2-2-2 家兔开口器及灌胃法
在处理好动物注射部位的皮肤后，左手将注射部位附近的皮肤提起，右手握住注射器，斜向刺入。刺入后左手放开皮肤，先用左手将针芯回抽，若无血液流入注射器则表明并未刺伤血管，则可将注射器针芯徐徐推进，将预定剂量的药物注入。若注射针头已刺伤血管，则应将针头拔出，重新注射。
（1）小鼠 用左手拇指和中指将小鼠颈背部皮肤轻轻提起，食指轻按其皮肤，使其形成一个三角形小窝，右手持注射器从三角窝下部刺入皮下，轻轻摆动针头，如易摇动则表明针尖在皮下，回抽无血后可将药液注入。针头拔出后，以左手在针刺部位轻轻捏住皮肤片刻，以防药液流出，大批动物注射时，可将小鼠放在鼠笼盖或粗糙平面上，左手拉住尾部，小鼠自然向前爬动，此时右手持针迅速刺入背部皮下，推注药液。注射量为0.l～0.3mL/10g。
（2）大鼠 注射部位可在背部或后肢外侧皮下。操作时轻轻提起注射部位皮肤，将注射针头刺入皮下，一次注射量约为1mL/100g。
（3）豚鼠 注射部位可选用大腿内侧、背部、肩部等皮下脂肪少的部位。通常在大腿内侧，注射针头与皮肤成45°的方向刺入皮下，确定针头在皮下推入药液，拔出针头后，拇指轻压注射部位片刻。
（4）家兔 注射方法参照小鼠皮下注射法。
动物腹部向上固定，腹腔穿刺部位一般多在腹白线偏左或偏右的下腹部。
（1）小鼠 左手固定动物，使鼠腹部面向捉持者，鼠头略朝上。右手持注射器朝头部方向进行穿刺，注射针与皮肤面成45°刺入下腹部，针头刺入皮肤后进针3mm左右，当感到落空感时表示已进入腹腔，回抽无肠液、尿液后即可注射（图1-2-2-3）。注射量为0.1～0.2mL/10g。应注意切勿使针头向上注射，以防针头刺伤内脏。
图1-2-2-3 小鼠腹腔注射法
（2）大鼠、豚鼠、家兔 皆可参照小鼠腹腔注射法。但应注意家兔在腹白线两侧注射，离腹白线约1cm处进针。大鼠注射量为1～3mL/100g。
静脉注射应根据动物的种类选择注射的血管。小鼠和大鼠多选用尾静脉，家兔多选用耳缘静脉，豚鼠可选用前肢皮下头静脉、后肢小隐静脉注射。因为静脉注射是通过血管给药，所以只限于液体药物。如果是混悬液，可能会因悬浮粒子较大而引起血管栓塞。
（1）小鼠、大鼠 多采用尾静脉注射。鼠尾静脉有3根，左、右两侧及背侧各1根，两侧尾静脉较易固定，应优先选择。注射时，先将动物固定于固定器内（图1-2-2-4），可采用筒底有小口的玻璃筒、金属或铁丝网笼。将全部尾巴露在外面，以右手食指轻轻弹尾尖部，必要时可用45～50°C的温水浸泡尾部或用75%乙醇反复擦拭尾部，以达到消毒、扩张血管、软化表皮角质的目的。以拇指与食指捏住尾部两侧，使尾静脉充盈明显，以无名指和小指夹持尾尖部，中指从下托起尾巴固定之。用4号针头，针头与尾部成30°刺入静脉，推动药液无阻力，且可见沿静脉血管出现一条白线，说明针头在血管内，可注药。如遇到阻力较大，皮下发白且有隆起时，说明针头不在静脉内，须拔出针头重新穿刺。注射完毕后，拨出针头，轻按注射部位止血。一般宜从尾尖端开始，逐渐向尾根部移动，以备反复应用，一次注射量为0.05～0.1mL/10g。
图1-2-2-4 小鼠尾静脉注射法
（2）豚鼠 可选用多部位的静脉注射，如前肢皮下头静脉、后肢小隐静脉或雄鼠的阴茎静脉等，豚鼠的耳缘静脉也可注射，一般前肢皮下头静脉穿刺易成功。豚鼠的静脉管壁较脆，注射时应特别小心。一次注射量不超过2mL。
（3）家兔 一般采用耳缘静脉注射，兔耳缘静脉沿耳背后缘走行（图1-2-2-5）。将覆盖在静脉皮肤上的兔毛仔细拨去或剪去，可用水湿润局部，将兔耳略加搓揉或用手指轻弹血管，使兔耳血流增加，并在耳根压迫耳缘静脉，使其瘀血而发生血管怒张。注射者用左手食指和中指夹住静脉近心端，拇指和小指夹住耳缘部分，以左手无名指和小指放在耳下作垫，待静脉充盈后，右手持注射器使针头尽量由静脉末端刺入，顺血管方向平行、向心端刺1～1.5cm，放松左手拇指和食指对血管的压迫，右手试推注射器针芯，若注射阻力较大或出现局部肿胀，说明针头没有刺入静脉，应立即拔出针头；若推注阻力不大，可将药物徐徐注入。注射完毕后，与血管平行地将针头抽出，随即以棉球压迫针眼止血。
实验过程中如需反复静脉给药，也可不抽出针头，用动脉夹将针头与兔耳固定，换一有肝素生理盐水的注射器接上，防止血液流失和凝固，以备下次注射时使用。
图1-2-2-5 家兔耳缘静脉注射法
涂布给药法是将药物涂擦在实验动物的皮肤上，主要用于鉴定药物经皮肤的吸收作用、局部作用或致敏作用等。药物与皮肤接触的时间可根据药物性质和实验要求而定。
吸入给药法是通过特殊的吸入装置，使药液呈气雾状喷出，经实验动物口、鼻吸入后，进入支气管和肺泡吸收而发挥作用。