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1.掌握常规压片法制备染色体标本的基本原理和方法。
2.了解细胞周期过程中染色体的动态变化。
染色体是遗传物质的载体。植物染色体标本的制备，常用分生组织如根尖、茎尖或幼嫩的叶片做实验材料。常规压片法是观察植物染色体的常用方法，其程序包括取材、预处理、固定、解离、染色和压片等步骤。但常规压片法也有不足，染色体常不能完全散开，容易重叠、变形、断裂，影响显带结果，核型分析较困难。对植物细胞去壁低渗处理，可以弥补以上不足，方法也较为简单，无需特殊设备，能取得很好的效果。借助纤维素酶和果胶酶将细胞间的果胶和纤维素溶解掉，使植物细胞只有质膜，再进行染色并压片制备植物染色体标本，可显著提高染色体的分散程度，分散良好的标本片可用于染色体计数、组型分析、显带、显微操作、原位杂交等分子细胞遗传学研究领域。
1.仪器、用具：光学显微镜、恒温培养箱、剪刀、镊子、刀片、培养皿、吸水纸、滴管、载玻片、盖玻片。
2.材料：小麦根尖。
3.试剂：0.1%秋水仙素溶液、Carnoy固定液（甲醇∶冰乙酸=3∶1）、1mol/L HCl、亚硫酸水溶液（漂洗液）、纤维素酶、果胶酶、改良苯酚品红染色液（Carbor fuchsin）。
1.取材：将小麦培养在培养皿中，25℃温箱发芽，待胚根长达1~2cm时，剪取0.5cm长的根尖部分。
2.预处理：剪下根尖浸入0.1%的秋水仙素溶液中，室温下处理3~4小时。也可将剪下的根尖放置冰箱，在0~3℃条件下处理24小时，使分裂的细胞尽可能集中于分裂中期。秋水仙素处理能使大量细胞分裂停留在中期，有助于观察染色体。
3.固定：将经过处理的根尖材料用水洗净，放入Carnoy固定液固定2h,换入70%的酒精，使细胞的分裂活动处于停滞状态，冰箱中保存备用，保存时间最好不超过两个月。
4.解离：将固定好的根尖用水漂洗5次，每次3min,取出根尖放入1mol/LHCl（58~60℃解离对比）解离14~15min,软化去除细胞壁及果胶物质，使细胞易于分散。自来水冲洗，再加入1%纤维素酶和果胶酶混合酶液1mL,在28℃温箱中酶解30min。
5.洗涤：吸取酶液，加蒸馏水慢慢冲洗3~5次，最后置于蒸馏水中，低渗30min。低渗处理使细胞体积增大，染色体分散，容易观察计数。
6.染色：将根尖置于载玻片中央，用刀片将根管和伸长区去掉，只留乳白色的分生区，用改良苯酚品红染色液染色5~10min,盖上盖玻片。
7.压片：在盖玻片上面覆以吸水纸，用拇指垂直压片，然后用铅笔的橡皮头轻轻均匀地在同一个方向敲打盖玻片，使细胞和染色体分散，直至材料呈雾状。
1.植物根尖生长点与茎生长点，不存在G0期，不断分裂，所以一般取根尖实验。
2.秋水仙素处理，能使大量细胞分裂停留在中期，有助于观察染色体。
3.低渗溶液使细胞体积增大，染色体分散，容易观察计数。
1.简述前处理过程中加入秋水仙素的作用，以及酸解的时间和温度对染色体标本制片质量的影响。
2.绘制1张有丝分裂中期细胞染色体图像，简要说明其染色体特征。