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第四章
丁型肝炎病毒

丁型肝炎病毒(hepatitis D virus,HDV)又称δ肝炎病毒(hepatitis delta virus),是引起与HBV相关联的急性和慢性肝病的亚病毒病原体。HDV持续复制致肝硬化和肝癌的概率分别为每年4%和2.8%。HBV提供HBsAg作为HDV的包膜。HDV加重HBV相关疾病的严重性。在HDV-HBV共同感染的患者中,急性重型肝炎、慢性活动性肝炎和肝硬化的发生率比单纯HBV感染患者高。HDV感染和疾病的模式在不同的流行病学地区有所不同。在美国,HDV的流行率低,传播主要是通过静脉注射吸毒。在希腊和意大利的部分地区,流行率较高,主要是通过家庭传播。在发展中国家,20%或以上的HBsAg携带者感染HDV。

第一节 丁型肝炎病毒生物学特性

一、丁型肝炎病毒分类地位及形态结构

成熟的HDV有包膜,核衣壳为二十面体对称的球形,直径为35~37nm。病毒颗粒内部为由病毒基因组和δ肝炎抗原(HDAg)所组成的核糖核蛋白体,包膜是HBsAg。HDV是缺陷病毒,必须得到嗜肝病毒,如人乙型肝炎病毒(HBV)、土拨鼠肝炎病毒(WHV)和鸭乙型肝炎病毒(DHBV)等辅助病毒的帮助,才能成为成熟的病毒颗粒并具有感染性。HDV RNA及其复制的机制与植物卫星病毒或类病毒相似,但其分类学地位未定。

二、丁型肝炎病毒敏感细胞及动物

除了人以外,HDV还能引起黑猩猩、美洲旱獭、土拨鼠和鸭子的一过性感染。我国学者应用感染HDV的猩猩和人血清分别接种土拨鼠肝炎病毒(woodchuck hepatitis virus,WHV)感染的和未感染的动物。结果显示,来自于猩猩或人的HDV,均能使携带有WHV的10只土拨鼠全部感染,而非携带有WHV的土拨鼠则不能被感染,证明人类的HDV不仅可以由人至猩猩的感染,而且还可以由猩猩至土拨鼠的感染。由人至猩猩的感染并未改变HDV以HBsAg为包膜所进行的复制,而猩猩至土拨鼠的感染则以WHV的表面抗原(WHAg)为包膜,在动物体内高效复制。由于感染WHV的土拨鼠肝纤维化期短且能在2~3年内形成肝细胞癌,这为研究HDV/HBV感染的慢性化、肝纤维化和肝细胞癌的发生、发展提供了难得的极有价值的模型。我国的另一研究利用HDV/HBV阳性血清感染体外培养的人胎肝细胞,建立了HDV/HBV感染人胎肝细胞体外培养系统。应用ELISA、免疫组化法、原位杂交法和斑点法检测感染人胎肝细胞和上清液中HBsAg、HDAg、HBV DNA和HDV cDNA,显示上清液和感染细胞中HBsAg、HDAg、HBV DNA和HDV cDNA在感染后第2天至第16天均可测出,其中上清液中HBsAg、HDAg以感染后第4~12天达高峰。表明HDV在原代培养人胎肝细胞中能稳定复制和表达至少达12天。

第二节 丁型肝炎病毒分子病毒学

HDV是目前已知的动物病毒中唯一具有负单链共价闭环RNA基因组的缺陷病毒。HDV颗粒由病毒RNA、δ肝炎抗原(HDAg)和HBsAg组成。HDAg是HDV编码的唯一的蛋白。HDV基因组与反基因组上存在数个可编码100多个氨基酸的开放阅读框(ORF),但迄今只发现位于反基因组上的ORF可编码HDAg。HBsAg为HBV所提供,构成HDV的包膜。HDV RNA和HDAg具有许多功能,在病毒生活周期起重要作用。

一、丁型肝炎病毒RNA基因组

(一)HDV RNA基因组结构

HDV RNA为一单股共价闭合环状负链RNA,在病毒感染的肝细胞核中还有与HDV基因组互补的RNA,称为反基因组(antigenome)。HDV基因组特征:①仅约1.7kb长,是已知动物RNA病毒中最小的。②HDV基因组的环状结构可自身折叠,其中有70%的碱基可以发生配对,从而形成不分支的杆状结构。不分支的杆状结构中的2个片段在HDV复制周期中起重要作用。其中一个片段为RNA编辑位点,另一个为位于杆状结构的一端,可能是转录的起始位点。③鸟嘌呤(G)+胞嘧啶(C)含量高达60%以上,二级结构稳定。整个杆状结构呈高度保守,提示其在HDV复制中起重要作用。④基因组和反基因组RNA的内部含有一个85nt的区域,具有自身切割的核酶活性,能进行自我切割和连接。

(二)HDV中国株基因组序列及其特点

自从美国学者Wang KS首次报道HDV基因组全序列以来,目前世界上已报道了十多株HDV基因组全序列,其中包括我国的河南株HDV。河南株HDV基因组全长1674bp,其中有345个 A,占20.6%;350个 T,占20.9%;477个 G,占28.5%;502个 C,占30%;G+C含量为58.5%。在基因组和反基因RNA上含有5个可编码100aa以上的开放阅读框,其中3个位于基因组,2个位于反基因组。反基因组上的一个ORF编码195aa的HDAg,第680/681位核苷酸之间为基因组RNA的自我剪切位点,第895/896位之间为反基因组RNA的自我剪切位点,在935~939位含有类病毒保守序列GAAAC,在1471~1476位含有拟病毒保守序列GATTTT,与已发表的不同基因型HDV株比较,河南株与我国台湾株核苷酸同源性最高,为94.3%,与HDV-2日本株同源性为75.4%,与HDV-3秘鲁株同源性最低,仅为66.3%。

比较我国河南株HDV与其他已知HDV株cDNA序列,发现有5个集中保守区域,第一个位于651~738位之间,为基因组RNA自我剪切功能区,第二个位于838~919位之间,为反基因组RNA的自我剪切功能区,第三个位于1086~1118之间,位于HDAg中部的1/3与C端交界处,编码的氨基酸多为疏水性,与完整病毒的包装密切相关,第四个保守区位于1259~1319之间,位于HDAg的中部1/3区,为HDAg的RNA结合功能域,与HDAg的反式激活调节机制密切相关,第五个保守区位于1424~1482之间,负责编码N端部分氨基酸,该区不仅富含碱性氨基酸而且是亮氨酸拉链区,与HDAg的多聚化有关。

(三)HDAg

HDV反基因组中ORF可编码两种形式的抗原,分子量为24kD的小抗原S-HDAg和27kD的大抗原L-HDAg,前者对HDV复制有反式激活作用,后者则反式抑制HDV复制。S-HDAg支持HDV复制的机制有以下几个方面;①加强HDV RNA的自身切割;②稳定环状HDV RNA;③抑制HDV RNA的多聚腺苷酸化,从而促进折叠成杆状结构。195aa的S-HDAg对复制起重要的促进作用,随着复制的进行,将产生L-HDAg,L-HDAg在S-HDAg的C末端延长19个aa。目前已知,L-HDAg的形成系由于RNA编辑所致,这一过程S-HDAg C末端的琥珀终止密码子变成色氨酸密码,使编码蛋白得以延长。

两种形式的HDAg拥有几个相同的功能结构,包括RNA结合结构域、核定位信号、卷曲螺旋模型、螺旋-环-螺旋结构,C端富含脯氨酸和甘氨酸结构,HDAg的这些结构域与HDV的复制密切相关。L-HDAg末端的19个氨基酸序列并非保守的但具有基因型相关性,而且是作为细胞膜黏附序列和包装信号而存在。

二、丁型肝炎病毒的复制

HDV RNA是以滚环的方式进行复制的,其步骤包括:①HDV在HBsAg的pre-S1区域共同作用下黏附宿主细胞,其中受体机制尚不清楚;②环状基因组RNA和HDAg进入宿主细胞,在胞质脱去衣壳,HDV基因组进去细胞核;③以基因组RNA为模板,在宿主RNA聚合酶Ⅱ的作用下转录生成mRNA和反基因组RNA,新生RNA可进行RNA编辑;④ mRNA进行5'端盖帽和3'端多聚腺苷酸化(PolyA),成熟的mRNA转运到细胞质进行翻译生成HDAg;⑤单位长度的反基因组RNA成环,反基因组经核酶自剪切后RNA进行连接;⑥以线性或环状反基因组为模板,在宿主RNA聚合酶Ⅱ作用下转录生成基因组;⑦单位长度基因组成环,基因组核酶自剪切后RNA连接;⑧环状基因组RNA与S-HDAg或L-HDAg的联系,部分核糖核蛋白(RNP)存在胞质;⑨病毒RNP和HBV包膜蛋白在内质网相互作用,包装和释放病毒颗粒。在这一复制模式中,环状基因组RNA作为模板转录多聚线性反基因组转录本,后者在核酶位点经历自我剪切。自我剪切所产生的末端连接形成环状的反基因组单体,并以此作为基因组RNA转录的模板。

HDV基因组RNA的合成需要磷酸化和甲基化的S-HDAg,但反基因组RNA的复制则不需要修饰的S-HDAg。复制开始,L-HDAg的表达抑制基因组的复制,然而反基因组的复制不受影响。研究表明S-HDAg在HDV RNA复制的起始和延长都是必不可少的。

此外,HDAg的蛋白修饰调节HDV的复制,S-HDAg的13位精氨酸的甲基化,72位赖氨酸乙酰化和177位丝氨酸磷酸化对HDV mRNA的转录具有非常重要的作用。S-HDAg的这三种修饰在反基因组RNA的合成是可有可无的,但对基因组RNA的合成却是必不可少的。虽然反基因组和mRNA的合成具有相同模板,HDV反基因组合成的细胞机制与基因组RNA合成和mRNA的转录不尽相同,HDAg的乙酰化与去乙酰化可能在HDV不同RNA合成过程中发挥分子开关的作用。L-HDAg异戊二烯化为HDV包装所必需。

HDV RNA有两个独特的性质对其滚环复制机制是至关重要的。第一,HDV RNA转录是由宿主RNA聚合酶所介导的。人类是HDV的唯一宿主,但不存在RNA依赖的RNA聚合酶。Valerie等研究表明HDV的复制需要人类的RNA聚合酶Ⅰ、RNA聚合酶Ⅱ和RNA聚合酶Ⅲ,而且这三种RNA聚合酶都连接在HDV末端茎环结构或其附近,RNA聚合酶Ⅰ被认为参与反基因组的复制。有些研究提示,转录起始于杆状RNA的一端,并可在没有HDAg的细胞核提取物进行。然而,转录的发生机制、HDAg、HDV RNA结构和另外的宿主因子的特殊作用仍有待确定。第二,HDV RNA的自我剪切活性,这是将线性RNA加工成环状复制产物所需的。基因组和反基因组RNA二者均含有自我催化的RNA片段(核酶),完成自我剪切功能。基因组和反基因组的核酶活性都与HDV RNA的成功复制有关。

虽然HDV基因组复制不需要HBV辅助,但HDV颗粒的装配和释放却需要HBV的辅助。

三、丁型肝炎病毒基因分型

近来,HDV被分为HDV-1~HDV-8八型,在不同基因型之间的序列变异可高达整个RNA基因组的40%以及氨基酸序列的35%。并具有不同的地理分布和相关的疾病谱。地理分布最为广泛的是基因型HDV-1,主要源于北美、欧洲、非洲、东亚和西亚、南太平洋,与广谱的慢性肝病有关。研究表明与HDV-2慢性感染者相比,HDV-1慢性患者病情不易缓解,预后较差。HDV-2和HDV-4仅见于东亚地区,与该地区的部分轻型肝病有关。HDV-5~HDV-8分布在非洲。HDV-3仅在南美北部发现,该地区的HDV感染与特别严重的疾病有关。HDV-3被认为与A和F基因型HBV相关。虽然HBV基因型似乎不影响HBsAg与HDV的相互作用,但是HDV基因型可能会影响HBsAg与HDV包装形成病毒颗粒。自然发生的HBV变异株产生的具有氨基酸序列差异的HBsAg降低HDV-2和HDV-4的包装效率,但对HDV-1没有影响。这可能与HDV-1在全世界的广泛分布有关。

四、丁型肝炎病毒和乙型肝炎病毒的相互影响

HDV基因复制和表达能影响HBV基因复制和表达,反之亦然。有学者用HDV RNA和HBV DNA共转染Huh7细胞,结果发现3.5kb和2.1kb的HBV mRNA表达减少,HBV颗粒的释放也同样减少,说明HDV有抑制HBV基因表达和病毒颗粒释放的作用。用表达HDAg的质粒和HBV DNA共转染时,发现3.5kb和2.1kb的HBV mRNA显著减少,进一步说明HDAg有抑制HBV基因表达的作用。我国学者用PSVLD 3 转染HBV的体外培养细胞株(2.2.15细胞株),也发现培养上清液中HBsAg、HBeAg和HBV DNA的阳性强度有所减弱。HDV抑制HBV基因表达的机制至今未明,有两种可能机制:①HDAg与HBV mRNA结合而降低HBV mRNA的稳定性;②HDAg与HBV DNA的保守序列直接或间接结合导致HBV DNA转录减少。但目前还没有证据证实HDAg与HBV DNA结合。总之,HDV对HBV复制和分泌有一定的抑制作用,这种抑制作用的环节和机制目前还不太清楚,有待深入研究。

HDV包膜是由HBV编码的大蛋白、中蛋白和主蛋白所构成,为了探讨这三种蛋白对HDV的不同影响,设计了三个实验:①用缺失编码大蛋白和中蛋白的HBV基因突变体与HDV RNA共转染Huh7细胞;②用缺失中蛋白的HBV基因突变体与HDV RNA共转染Huh7细胞;③用缺失大蛋白的HBV基因突变体与HDV RNA共转染Huh7细胞。在实验的培养上清液中均可检到HDV颗粒,收集三种实验的培养上清液分别在体外感染培养黑猩猩肝细胞,结果发现只有实验②的培养上清液使黑猩猩肝细胞感染上了HDV,提示主蛋白是HDV颗粒装配所必需的,大蛋白是HDV感染性所必需的,而中蛋白既非HDV颗粒装配所必需,也非病毒具有感染性所必需。至于中蛋白在HDV复制、表达和装配中起什么样作用,目前还不清楚,需进一步研究。

HDV感染多见于严重的及慢性肝脏疾病:在HBV/HDV感染的急性期,HBV复制受到抑制:而在重症型、慢性期和肝硬化时则未见这种抑制现象,说明在HBV/HDV感染的不同阶段可表现出不同的病毒复制现象。

Andrea等通过数理模式分析,阐述了HDV是如何影响HBV的。从个体角度而言,HDV在两方面影响HBV的感染:HDV重复感染降低HBV的传染性和加速HBV慢性化进程。这两方面都表明HDV重复感染影响HBV在人群中传播。当HDV感染性强时,HDV重复感染常发生在HBV急性感染早期,这将促进HBV慢性化,因此促进HBV在人群中传播;如果HDV感染性弱,HDV重复感染则大多数发生在HBV慢性感染阶段,这将降低HBV感染性和HBV的流行。由于HDV影响HBV的复制,还可能影响HBV的感染性,因此设想利用HDV来控制HBV的复制以达到治疗HBV的目的并不是没有道理的。

(林旭) QcLukNNJ/YA6T3MLdQlicwxrnQeTS6jwYta5XvZ41C8hW/ClJ/BCKgxRn32OK10U

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